轉染細胞效率低下的原因在生物醫(yī)學研究中，將外源基因導入細胞以研究其功能或使細胞展現(xiàn)出新的特性是非常常見的實驗手段。然而，轉染細胞的效率低下一直是科研人員面臨的一大難題。今天小編將探討轉染細胞效率低下的原因，以期為提高轉染效率提供有益的思路。

1.細胞類型和狀態(tài)  

不同的細胞類型具有不同的轉染效率。一些難轉染的細胞，如神經元和肝細胞，通常需要更復雜的轉染技術。此外，細胞的生長狀態(tài)也會影響轉染效率，處于對數(shù)生長期的細胞更容易接受外源基因。如果是貼壁細胞的話，貼壁率應該在70-80%；如果是懸浮細胞的話，應該是6X105個/孔（24孔板），一般是轉染前一天換液，轉染前用無血清培養(yǎng)基或PBS洗細胞一次。轉染的整個過程都不應該有抗生素。

2.轉染方法

選擇合適的轉染方法對提高轉染效率至關重要。常用的轉染方法包括化學法、物理法和生物法。每種方法都有其優(yōu)缺點，適用于不同的細胞類型和實驗需求。科研人員應根據自己的實驗條件和要求選擇適合的轉染方法。

3.轉染試劑

轉染試劑的質量和濃度直接影響轉染效率。一些劣質的轉染試劑可能導致細胞毒性過大，從而降低轉染效率。因此，選擇高質量的轉染試劑是提高轉染效率的重要因素。

4.基因載體

基因載體的種類和結構對轉染效率具有重要影響。不同的基因載體適用于不同的細胞類型和實驗需求。此外，基因載體的包裝和滴度也會影響轉染效率。

5.培養(yǎng)條件

細胞培養(yǎng)條件，如培養(yǎng)基、血清和添加劑的質量以及培養(yǎng)溫度和濕度等，都會影響細胞的生長狀態(tài)和活力，從而影響轉染效率。一般要在轉染后的4-6小時換液且換為有血清的培養(yǎng)基。也可以在原來的無血清培養(yǎng)基里面滴加血清

6.轉染用的質粒也要保證數(shù)量和質量，一般要高于2 μg以上。如果質粒純度不夠或含有對細胞有毒害的物質，會影響轉染效率。

7.操作手法

脂質體和DNA/RNA混合物應當一滴一滴地滴下來，從培養(yǎng)皿一邊滴到另一邊，邊滴邊輕搖培養(yǎng)皿，以確保均勻分布和避免局部高濃度。這些都是一些細枝末節(jié)，但是，如果不注意的話，影響轉染效率。

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